您现在的位置是:首页 > 石斛知识

石斛知识

论文:兜唇石斛多糖提取及脱蛋白工艺研究

2020-03-11 08:36:36 0
论文:兜唇石斛多糖提取及脱蛋白工艺研究 作者:赵俊凌,马洁,李戈,段立胜 【摘要】 目的研究兜唇石斛多糖提取及脱蛋白的制备工艺

论文:兜唇石斛多糖提取及脱蛋白工艺研究

作者:赵俊凌,马洁,李戈,段立胜 

【摘要】  目的研究兜唇石斛多糖提取及脱蛋白的制备工艺。方法采用正交实验设计制备不同提取条件多糖溶液,苯酚-硫酸法测定溶液中多糖含量,光密度差值法测定蛋白含量。结果兜唇石斛多糖提取的最佳条件,提取温度100℃,提取时间2 h,加水量200 ml,醇析浓度为80%,醇析时间30 h,多糖脱蛋白的最佳条件,样品/萃取剂(V/V)为4∶1,氯仿/正丁醇(V/V)为4∶1,萃取时间30 min。结论不同提取及萃取条件下,兜唇石斛多糖提取及脱蛋白测定结果存在明显差异。

【关键词】  兜唇石斛; 多糖; 提取; 脱蛋白; 正交设计  

Abstract:ObjectiveTo investigate the optimum conditions of extraction and deproteinization from polysaccharide of Dendrobium devonianum.  MethodsThe different concentrations of polysaccharide extraction were acquired with the orthogonal experimental design,and the phenolsulfuric acid method and UV spectrophotometric method were used to determine the content and deproteinization of polysaccharide.  

ResultsThe optimum conditions of polysaccharide extraction from Dendrobium were established as follows:extracting temperature of 100℃,extracting time 2 hours,volume of adding water 200ml,precipitation concentration of ethanol 80%,precipitation time of ethanol 30 hours,that of deproteinization were established as follows:Chloroform-n-butanol 4:1,Chloroform:n-butanol 4:1,stirring time 30 minutes.  

ConclusionUnder the different condition of extraction and deproteinization,there has significant differences on the determination results for the content of polysaccharide and protein in Dendrobium devonianum.  

Key words:Dendrobium devonianum; Polysaccharide; Extraction; Deproteinization; Orthogonal design  

石斛属Dendrobium是兰科中的第二大属,全球共有约一千五百多种,主要分布于亚洲的热带和太平洋岛屿的东亚、东南亚及澳大利亚等地区,我国有76种(74个种,2个变种) 主要分布于华南及西南地区。石斛作为一种名贵中药被《本草纲目》收录,在《神农本草经》中也被列为上品,其有养胃生津、滋阴清热、明目的功能,用于阴伤津亏,口干烦渴,食少干呕,病后虚热,目暗不明等症状。现代药理研究发现石斛属植物具有抗肿瘤、免疫调节、抗氧化、抗血小板聚集、扩张血管、降低血糖等多种活性[1],同时在治疗胃肠道疾病和治疗白内障方面也有很好疗效。  

兜唇石斛Dendrobium aphyllum(Rohb. ) C. E. Fishcher为市场上流通品种,其药理和化学成分的研究都相对较少,赵永灵[2]等从兜唇石斛的茎中分离得到3种多糖: AP-1,AP-2,AP-3。它们的分子量分别为86 300,61 500,43 100。它们是β-(1→4)连接的,含O-乙酰基的,吡喃型的直链D-葡萄甘露聚糖,能使ICR纯系小鼠脾重量、胸腺重量增加,抗体细胞数明显增多,T细胞和B细胞显著增殖,具有免疫增强作用。张朝凤等[3]从兜唇石斛分离了11个芳香族类成分,其中9个为茋类化合物是首次从该植物中分离得到,4, 4′-二羟基-3, 3′、 5-二甲氧基联苄(1)、 3′, 4-二羟基-3, 5′-二甲氧基联苄、 3, 3′-二羟基-5-甲氧基联苄(3), 3, 4, 5-三羟基-3-甲氧基联苄, 3, 5, 4′-三羟基联苄, 3, 5-二甲氧基-4, 4′-二羟基-联苄, 2, 5-二羟基-4-甲氧基菲, 2, 4, 7-三羟基-9, 10-二氢菲和2, 5-二羟基-4-甲氧基-9, 10-二氢菲(hircino,l9);另外两个苯乙烷类衍生物,对羟基苯乙醇葡萄糖苷和对羟基苯乙酸为首次从石斛属分离得到。邵莉等[4]从兜唇石斛分离并鉴定了8个化合物,其中4′-甲氧基苜蓿素,苜蓿素, 7 , 3′ , 5'-tri-O-methyltricetin,阿洛醇,蔗糖和icariside DZ为首次从该属植物中分离得到;酚类化合物丁香酸、木脂素类化合物丁香脂素为首次从该植物中分离得到。黎英等[5]发现兜唇石斛的水提物对·OH均有很强的清除作用。本实验对兜唇石斛多糖的提取及脱蛋白纯化工艺进行研究,为兜唇石斛开发利用提供参考。  

1 材料与仪器  

1.1 材料兜唇石斛产地为云南省,由药用植物研究所云南分所王云强助理研究员鉴定。  

1.2 试剂与仪器苯酚、浓硫酸、石油醚、无水乙醇、氯仿、正丁醇、丙酮、乙醚等均为分析纯。旋转蒸发器R-210(瑞士布奇),TU-1901新世纪紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器有限责任公司), 数显恒温水浴锅HH-4(常州国华电器有限公司),GZX-9140恒温数显鼓风干燥箱(上海博讯设备有限公司),METTLER TOLEDO系列分析天平AB135-S,PL203。  

2 方法与结果  

2.1 标准溶液配制[6~9]精密称取 105℃干燥恒重的标准葡萄糖 100.0 mg,置100 ml容量瓶中,加蒸馏水适量使溶解,稀释至刻度,摇匀。精密吸取 10 ml置100 ml容量瓶中,用蒸馏水稀释至刻度,每毫升含葡萄糖0.1 mg。  

2.2 检测波长的选择精密吸取标准葡萄糖溶液0.3 ml,置于具塞比色管中,加蒸馏水至 2.0 ml,再加苯酚试液 1.0 ml,摇匀,迅速滴加浓硫酸 5.0 ml,盖好塞子,迅速摇匀,放置 5 min,置沸水浴中加热 15 min,取出,冷水迅速冷却至室温,作为供试溶液。另以 2.0 ml蒸馏水同样操作,作为空白对照,在400~600 nm范围对供试溶液进行扫描。葡萄糖溶液在490 nm波长处有最大吸收度,兜唇石斛多糖溶液在490.50 nm波长处有最大吸收度,故选490.50nm作为样品的测量波长。  

2.3 标准曲线制作精取葡萄糖对照液,0.1,0.2 ,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7 ml,分别加入具塞比色管中,加蒸馏水使成2.0 ml,各加苯酚试剂1.0 ml,在旋转混匀器上摇匀,迅速滴加浓硫酸5.0 ml,摇匀,放置5 min,置沸水浴中加热15 min,冷水迅速冷却至室温。另以蒸馏水2.0 ml同法操作,作为空白对照,在490 nm处测其吸收度。以吸收度值为Y,葡萄糖浓度为X,得回归方程: Y =0.008 11+0.017 31X,r=0.999 5,说明该工作曲线在5.00~35.00 μg间的线性关系良好。图1 标准曲线  

2.4 精密度实验精取供试溶液5份,每份0.3 ml,加蒸馏水使成2.0 ml,各加苯酚试剂1.0 ml,按标准曲线操作,测定其吸收度。测定结果,葡萄糖RSD=1.23%,兜唇石斛RSD=0.70%,精密度较好。  

2.5 重复性实验精取干燥后的样品6份,分别提取,每份供试溶液取0.3 ml,加蒸馏水使成2.0 ml,各加苯酚试剂1.0 ml,按标准曲线操作,测定其吸收度。测定结果,兜唇石斛RSD=1.63%,重现性良好。  

2.6 显色稳定性试验精取供试溶液0.3 ml 加蒸馏水使成2.0 ml,加苯酚试剂1.0 ml,按标准曲线操作,分别测定 30,60,90,120,150,180,210,240 min的吸收度。测定结果,葡萄糖RSD=0.41%,兜唇石斛RSD=0.64%,240 min内有较好的光稳定性。  

2.7 多糖精制精密称取兜唇石斛干燥后粗粉10 g ,加入石油醚(60~90℃)100 ml,回流提取1 h,脱脂。过滤,挥干溶媒,以80%乙醇200 ml回流提取1 h,趁热过滤,挥干溶媒,加入蒸馏水500 ml回流提取2次,每次2 h,趁热过滤,减压浓缩至60 ml,用0.1%活性炭脱色,过滤,加入95%乙醇使溶液含醇80%,静置过夜,分出沉淀物溶于蒸馏水,Sevag法脱蛋白。上清液如上述醇沉,沉淀物依次用无水乙醇、丙酮、乙醚洗涤3次。将沉淀如上脱色、醇沉,得到多糖精制品于60℃烘干备用。  

2.8 换算因素精确称取60℃干燥至恒重的石斛多糖精制品各10 mg,分别置于100 ml量瓶,用蒸馏水稀释至刻度,摇匀,作为储备液。分别精取多糖储备液0.3 ml,按照标准曲线制备的方法操作,测定吸收度。另取葡萄糖标准溶液0.3 ml(含葡萄糖30 μg),同法操作,求出石斛多糖溶液中的葡萄糖含量,按下式计算换算因素:F=多糖溶液的浓度/多糖溶液中的葡萄糖浓度×稀释倍数。结果见表1。表1 换算因素  

2.9 提取工艺  

2.9.1 正交实验设计见表2。以提取温度(A)、提取时间(B)、溶剂体积(C)为影响因素,选取3个不同水平,以石斛多糖的含量为考察指标,采用L9(34)正交设计实验进行提取工艺的筛选[7]。表2 多糖提取正交实验  

2.9.2 浸提次数实验根据上述实验所得最佳提取条件,取3份样品进行平行实验,分别提取1~3次,研究多糖浸提次数与石斛多糖得率的关系。  

2.10 样品测定石斛样品经60℃干燥恒重,粉碎,过60目筛,精密称取0.500 g,置于500 ml的蒸馏烧瓶,加入50 ml石油醚(60~90℃)回流脱脂1h,过滤,挥干溶媒;80%100 ml乙醇提取1 h,残渣用80%热乙醇8 ml洗涤3次;加入200 ml蒸馏水回流提取2 h,趁热过滤,用热水洗涤残渣和烧瓶;冷却后,定容为250 ml。精取上述多糖溶液0.3 ml,按标准曲线项下操作,按下式计算样品中多糖的含量。  

多糖含量(%)=Cs×D×F×V/ W 式中:Cs为供试品溶液中葡萄糖浓度(μg/ml),D为供试品溶液的稀释因素,F为换算因素,V为供试溶液体积(ml),W为供试品质量(μg)。  

2.11 醇沉实验[10]  

2.11.1 乙醇浓度取一定量石斛多糖提取液分装于5支离心管中,并分别加入95%的乙醇,使乙醇的终浓度分别为50%,60%,70% ,80% , 90% ,4℃冰箱中静置过夜,离心,60℃烘至恒重,采用差重法检测乙醇浓度对多糖沉淀效果的影响。  

2.11.2 沉淀时间另取5支刻度离心管,分别加入等量的多糖提取液,并用乙醇使其终浓度达到80% 。在醇析12,24,36,48,60 h后,离心,60℃烘至恒重,采用差重法测定沉淀时间对多糖含量的影响。  

2.12 Sevag法脱蛋白实验[8]见表3。以石斛粗多糖溶液与氯仿-正丁醇体积比(A),氯仿与正丁醇配比(B)以及振荡时间(C)等为影响因素进行正交实验,每个处理重复3次,考察Sevag法去蛋白质的效果,分别测定处理前及处理后多糖溶液在280 nm处的吸光值。脱蛋白率(% )=原样品吸光值-脱蛋白后样品吸光值 /原样品中吸光值×100%表3 粗多糖脱蛋白正交实验  

2.13 数据处理所有统计分析均采用spss13.0软件和Excel软件处理。  

3 分析与讨论  

3.1 多糖提取工艺对浸提温度(A)、浸提时间(B)、加水量(C)等3个因素进行正交实验。结果见表4,各因素作用大小关系依次是A>C>B,多糖提取的最佳工艺配比为组合3,即 A1B3C3,提取温度100℃,提取时间2 h,加水量200 ml。从表5可知,浸提温度(A)对兜唇石斛多糖提取含量有极显著的影响意义(P<0.01),加水量(C)对提取多糖含量有一定影响(0.050.10)。表4 多糖提取正交实验结果表5 多糖提取方差分析  

3.2 提取次数 兜唇石斛样品在提取1次后,多糖基本上已被提取完全,最佳提取次数为1次(见表6)。表6 提取次数对多糖提取率的影响  

3.3 醇析实验在乙醇终浓度为80%时,多糖含量最高,当浓度更高时析出的多糖会有所下降(图2)。在80%醇析浓度下(图3),大约在24~36 h之间,多糖含量达到最大值,36 h后多糖含量降低,选择30 h作为沉淀时间。图2 醇沉浓度 图3 醇沉时间  

3.4 Sevag法脱蛋白兜唇石斛粗多糖脱蛋白实验结果表明,各因素R值大小分别为振荡时间(C)>样品与氯仿-正丁醇体积比(A)>氯仿与正丁醇体积比(B),反应时间是影响兜唇石斛多糖脱蛋白的主要因素,兜唇石斛多糖纯化的最佳组合为A2B2C3。即氯仿与正丁醇(V/V)的体积比为4∶1,样品/萃取剂(V/V)的体积比为4∶1,反应时间采用30 min。从表7~8可知,振荡时间(C)对多糖脱蛋白有显著的影响意义(0.010.10)。表7 脱蛋白正交实验结果 表8 脱蛋白正交实验分析  

4 结论  兜唇石斛多糖提取最佳工艺,在100℃热水中回流提取2 h,水体积200 ml;醇沉实验的最佳乙醇浓度为80%,沉淀时间30 h;粗多糖脱蛋白的最佳条件,样品/萃取剂(V/V)为4∶1,氯仿/正丁醇(V/V)为4∶1,振荡时间30 min。

 

 

【参考文献】   [1] Lin P ,Bi Z M, Xu Hong,et al. Advances in studies on pharmacology of plants from Dendrobium Sw [J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs, 2003, 34(11):19.  [2] Zhao Y L, Wang S L, Lee X Y. Studies on the polysaccharides of Dendrobium Aphyllum [J]. Acta Botanica YunnanicA,1994,16(4):392.  [3] Shao Li ,Huang W H,Zhang C F,et al. Study on chemical constituents from stem of Dendrobium aphyllum [J]. China Journal of Chinese Materia Medica,2008,33(14):1693.  [4] Zhao C F,Shao L,Huang W H,et al. Phenolic components from herbs of Dendrobium aphyllum [J]. China Journal of Chinese Materia Medica,2008,33(24):2922.  [5] 黎 英,赵亚平,陈蓓怡,等. 5种石斛水提物对活性氧的清除作用[J].中草药,2004,35(11):1240.  [6] 李亚芳,张晓华,孙国明.石斛中总生物碱和多糖的含量测定[J].中国药事,2002,16(7):426.  [7] Ni L J, Jiang X P, Chen D H .The Optimum Preparation Procedure for the Extracting Polyhexose Containedin Herba Dendrobii[J]. Strait Pharmaceutical Journal, 2000, 12(4):41.  [8] Qian Y,Lv B W. Study on extraction process of polysaccharide from Caulis Dendrobii [J]. Chinese Journal of Modern Applied Pharmacy, 2005, 22(4):293.  [9] Luo A X, Song G B, Luo A S, et al.Optimization of the Extraction Process of Polysaccharides in Dendrobium Chryseum by Orthogonal Experimental Design [J]. Study Journal of Traditional Chinese Medicine, 2005, 23(11):66.  [10] He T G,Yang L T,Li Y R,et al. Studies on the Optimum Technology for Extraction of Polysaccharides from Suspension-cultured Protocorms of Dendrobium candidum [J]. Acta Agriculturae Boreali-Occidentalis Sinica,2006,15(5):240.